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新闻时间:2015-08-25,来源:中国建材-商业资讯,作者:

滑石粉微生物学检验方法

标准名称 滑石粉微生物学检验方法
标准类型 中华人民共和国建材行业标准
标准号 JC/T 542—94
标准发布单位 国家建筑材料工业局 发 布
标准发布日期 1994-03-26发布
标准实施日期 1994-12-01实施
标准正文

1 主题内容与适用范围 本标准规定了滑石粉的微生物学检验方法及范围。 本标准适用于医药、食品及化妆品用滑石粉的微生物学检验。 2 术语 菌落总数:指样品经过处理,在一定条件下培养后,所得1g或1mL检样中所含细菌菌落 总数。 3 检验通则 3.1 取样及注意事项 3.1.1 每批滑石粉应随机抽两个或两个以上包装完好的单位,试样量不少于10g,以使检验 结果具有代表性。 3.1.2 凡异常的供试品,则选取有疑问的样品进行检验。凡包装开户可见霉变的、无须检 验即可判为不合格。 3.1.3 在检验前,应严格保持包装的原有状态,防止再污染。并放在阴凉干燥处。防止因 微生物再繁殖而影响检验结果。凡原包装已启开,则无代表性。 3.1.4 样品的稀释,须在1~2h内完成,以防止微生物繁殖或死亡。 3.1.5 微生物检验全过程,必须在无菌操作条件下进行,凡直接与样品接触的用具,均应 事先灭菌并保持无菌。 3.1.6 从样品检出致病菌的报告发出之日起,该菌菌种需保存一个月备查,阴性样品可及 时处理。 3.2 供试液制备的材料和仪器 a. 天平:感量0.1g; b. 三角烧瓶:300mL或500mL; c. 玻璃珠:φ5mm; d. 量筒:100mL; e. 电炉; f. 高压消毒锅; g. 滤纸。 3.3 供试液的制备方法 称10g试样,放入装有90mL稀释剂(生理盐水)和十几个玻璃珠的三角烧瓶中,经振摇制 成1∶10的试液备用。取用时必须混匀。 3.4 阳性菌株对照试验 3.4.1 每次检验,应同时进行阳性对照生长试验。 3.4.2 对照试验加入的已知活菌量,每批样品应控制在50~100个范围之内。 3.4.3 常用的阳性对照菌株,卫生部检定所编号:大肠杆菌44102、绿脓杆菌10104、金黄 色葡萄球菌26003等。 3.4.4 作阳性菌株对照试验时,应注意安全,严格防止对照菌污染样品和环境。 4 细菌总数测定方法 4.1 方法原理 每种细菌有它一定的生理特性、生长时对营养、温度、时间、pH、需氧性等的要求均不 相同。在实际培养中,不可能同时满足所有细菌的要求,因此只能测定在营养琼脂上发育的 嗜中温性需氧及兼性厌氧的细菌菌落总数。 4.2 材料和仪器 a. 恒温培养箱; b. 电热恒温水锅; c. 移液管:1mL及10mL; d. 平皿:φ90mm; e. 试管:18mm×200mm f. 试管架; g. 放大镜。 4.3 培养基和试剂 a. 营养琼脂培养基; b. 生理盐水:定量分装于试管(每支试管内9mL)。 4.4 试验程序 1∶10试液 ↓ 做几个连续倍数的稀释液 ↓ 选择2~3个连续稀释度,各加1mL于相应平皿 ↓ 平皿加入12~15mL营养琼脂 36±1℃↓48±2h 菌 落 计 数 4.5 试验步骤 4.5.1 试液稀释及培养 4.5.1.1 用1mL移液管取1∶10试液1mL,沿管壁加入盛有9mL盐水的试管(管的尖端不要触及 液面),振摇试管,作成1∶100均匀稀释液。 4.5.1.2 另取1mL移液管,按上述(4.5.1.1)操作制10倍递增稀释液,每次更换一支移液管 ,稀释至10[-3]~10[-5]倍。 4.5.1.3 选择2~3个连续稀释度,用吸取该稀释度的移液管,移1mL试液于平皿内,每个稀 释度作2~3个平皿。 4.5.1.4 将预先放在45±1℃恒温水浴中的营养琼脂培养基,加入平皿约15mL,并转动平皿 混合均匀。同时再将营养琼脂15mL倾斜加入装有1mL不含试样的稀释剂平皿中,作为空白对 照。 4.5.1.5 琼脂凝固后,翻转平皿,置36±1℃培养箱内,48±2h取出进行菌落计数。平皿菌 落数乘以稀释倍数,即为每克样品所含菌落总数。 4.5.2 计数方法 4.5.2.1 用肉眼观察,必要时用放大镜。 4.5.2.2 求出同一稀释度各平皿的菌落平均值。若平皿中有连成大片的菌落生长,该平皿 不宜计数。若片状菌落不到平皿的一半,其余一半的分布又很均匀,可将此半个计数后乘以 2,代表全皿。 4.5.2.3 选择平均菌落数在30~300之间的平皿,作为菌落总数的测定范围。当只有一个稀 释度符合此范围,即以该平皿菌落数乘以稀释倍数(见下表中例1)。 4.5.2.4 有两个稀释度,平均菌落数均在30~300之间,则应求出两者菌落总数之比值决定 。小于或等于2,报告其平均数;大于2则报告其中较小的菌落数(见下表中例2及例3)。 4.5.2.5 所有稀释度,其平均菌落均大于300个,则按稀释度最高的平均菌落数乘以稀释倍 数(见下表中例4)。 4.5.2.6 所有稀释度的平均菌落均小于30个,则按稀释度最高的平均菌落数乘以稀释倍数( 见下表中例5)。 4.5.2.7 所有稀释度的平均菌落均不在30~300个之间,则以最接近30或300的乘以稀释倍 数(见下表例6)。 4.5.2.8 所有稀释度均无菌落生长,为每克小于10个。 4.5.3 报告 菌落数在100以内,按实数值报告;大于100,采用二位有效数字乘以10的指数来表示, 有效数字后面的数值用修约法处理。以n/g为计量单位。 细菌计数结果及报告方法 ________________________________________________________________________________ 不同稀释度的平均菌落数 两稀释度 菌落总数 报告方式 例次 10[-1] 10[2] 10[3] 菌数之比 n/g n/g ________________________________________________________________________________ 1 1365 164 20 - 16400 1.6×10[4] 2 2760 295 46 1.6 38000 3.8×10[4] 3 2890 270 60 2.2 27100 2.7×10[4] 4 不可计 4650 513 - 513000 5.1×10[5] 5 27 11 5 - 270 2.7×10[2] 6 不可计 305 12 - 30500 3.1×10[4] ________________________________________________________________________________ 5 霉菌和酵母菌数测定方法 5.1 方法原理 真菌具有明显的细胞核,多数需氧,在偏酸含糖的培养基、较高湿度25~28℃的温度条 件下生产良好。本方法根据这些生物特性,进行培养和菌落计数。 5.2 材料和仪器 a. 恒温培养箱; b. 振荡器; c. 电热恒温水浴锅; d. 试管:15mm×150mm; e. 移液管:1mL和10mL; f. 平皿:φ90mm; g. 生物显微镜; h. 载破片、盖破片。 5.3 培养基和试剂 a. 虎红琼脂培养基; b. 蒸馏水:定量分装于试管(每支试管9mL)。 5.4 试验程序 1∶10试液 ↓振荡30min 做几个连续倍数的稀释液 ↓ 选择3个连续稀释度,各加1mL于相应平皿 ↓ 每皿加入12~15mL培养基 25~28℃↓72h 菌 落 计 数 5.5 试验步骤 5.5.1 试液稀释及培养 5.5.1.1 将1∶10试液置振荡器中,振荡30min,使霉菌孢子充分散开。 5.5.1.2 按细菌总数测定4.5.1.1~4.5.1.2中规定的稀释方法,稀释至10[-1]~10[-4]。 5.5.1.3 根据试样污染程度,选择3个连续稀释度,分别移1mL稀释液于相应平皿中。 每个稀释度做2~3个平甲。然后将预先放在水浴锅中的45±1℃的虎红琼脂培养基,分 别加入约15mL,并转动平皿,混合均匀。同时按细菌总数测定中的方法,做空白对照。 5.5.1.4 待琼脂凝固后,倒置于25~28℃培养箱中,72±2h取出进行菌落计数。 5.5.2 计数方法 用肉眼观察,选择同一稀释度平均菌落数在5~50个之间的,乘以稀释倍数,作为霉菌 和酵母菌总数。计数和报告中所遇到的各种情况,按细菌总数测定4.5.2中的规则。 注:计数时,如不能肯定是霉菌和酵母菌,可取培养物涂片,直接镜检或革兰氏染色后 镜检。 6 大肠菌群、粪大肠菌群检验方法 6.1 方法原理 根据其所具有的生物学特性。如革兰氏阴性无芽胞杆菌,分别在37℃和44℃、24~48h 能发酵乳糖、产酸、产气,并能在选择性培养基上产生典型菌落,能分解色氨酸产生靛基质 等。 6.2 材料和仪器 a. 恒温培养箱; b. 电热恒温水浴; c. 试管及小倒管:15mm×150mm; d. 移液管:1mL、10mL; e. 平皿:φ90mm; f. pH试纸; g. 生物显微镜; h. 载破片和盖破片。 6.3 培养基和试剂 a. 乳糖胆盐培养基; b. 伊红美兰琼脂(EMB); c. 革兰氏染色液; d. 蛋白胨水; e. 靛基质试剂; f. 乳糖发酵培养基。 6.4 试验程序 1∶10试液 ↓ 做三个连续稀释度 ↓ 乳糖胆盐发酵管 36±1℃↓48h _________________________ ↓ ↓ 不产酸、不产气 产酸、产气 ↓ ________________________ 阴性 | | 乳糖胆盐发酵管 证实试验 44℃↓~48h ↓ ________________ ____________ ↓ ↓ ↓ ↓ 不产酸、产气 产酸、产气 EMB平板 乳糖发酵 ↓ ↓ 阴性 _________________ ↓ ↓ 靛基质试验 EMB平板 36±1℃↓24h 梁色镜检 6.5 试验步骤 6.5.1 试液稀释 6.5.1.1 用1∶10试液,按细菌总数测定4.5.1.1~4.5.1.2中的方法做10倍递增稀释液。 6.5.1.2 根据样品的污染情况,选择三个连续稀释度。 6.5.2 大肠菌群 6.5.2.1 将试液分别接种于预先装有10mL乳糖胆盐培养基的试管内,每管1mL,每一稀释度 接种3管,置36±1℃培养48h,如所有试管内部不产酸,不产气,则可报告大肠菌群阴性。 如有产气、产酸者则需按6.5.2.2进一步做证实试验。 6.5.2.2 划线接种于EMB平皿,置36±1℃,培养18~24h,取出观察形态,挑取可疑菌落做 染色镜检,同时做乳糖发酵试验,凡乳管产气、镜检为革兰氏阴性无芽胞杆菌,即可报告大 肠菌群阳性。 6.5.3 粪大肠菌群 6.5.3.1 将第一次产酸、产气的乳糖胆盐培养物,分别以1mL接种于各乳糖胆盐发酵管内, 置44±0.5℃水浴锅,培养24~28h。如所有乳糖胆盐发酵管都不产酸,不产气,则可报告粪 大肠菌群阴性,如产酸、产气,则进行6.5.3.2~6.5.3.5程序。 6.5.3.2 划线接种于EMB平皿,置36±1℃,培养18~24h,同时接种于蛋白胨水,置44±0. 5℃培养24h。 6.5.3.3 经培养后,在EMB平皿上典型大肠菌群菌落,呈深紫黑色,圆形、边缘整齐,表面 光滑湿润。常见有金属光泽。也有的呈紫黑色,不带或略带金属光泽,或粉紫色,中心较深 的菌落。 6.5.3.4 挑取上述可疑菌落,涂片作革兰氏染色镜检。 6.5.3.5 在蛋白胨水培养液中,加入靛基质试剂0.5mL,阳性反应则液面呈现玫瑰红色,阴 性反应液面呈试剂本色。 6.5.3.6 平皿上有典型菌落,经证实为革兰氏阴性短杆菌,靛基质试验阳性,则报告粪大 肠菌群阳性。 7 绿脓杆菌检验方法 7.1 方法原理 根据本菌生物学特征:革兰氏阴性杆菌、氧化酶试验阳性,能产生绿脓菌素。此外还能 液化明胶,还原硝酸盐为亚硝酸盐。在42℃条件下生长等,可与类似菌相区别。 7.2 材料和仪器 a. 恒温培养箱; b. 冰箱; c. 三角烧瓶:500mL、300mL; d. 试管:φ18mm×200mm; e. 平皿:φ90mm; f. 移液管:1mL、10mL; g. 生物显微镜; h. 载破片及盖破片; i. 接种环及针; j. 酒精灯; 7.3 培养基和试剂 a. 营养琼脂培养基(普通肉汤培养基); b. 十六烷三甲基溴化铵培养基; c. 乙酰胺培养基; d. 绿脓菌色素测定用培养基; e. 明胶培养基; f. 硝酸盐蛋白胨水培养基; g. 1%的二甲基对苯二胺试液; h. 三氯甲烷(氯仿); i. 1mol/L的盐酸。 7.4 试验程序 1∶10试液 ↓ 普通肉汤培养液,增菌 37℃↓18~24h 十六烷三甲基溴化铵培养基、分离培养 37℃↓18~24h 普通肉汤培养基、纯培养 37℃↓18~24h __________________________ ↓ ↓ 染色镜检 生化试验 _________________ ↓ ↓ 氧 绿 硝 产 明 42℃ 化 脓 酸 气 胶 生 酶 菌 盐 试 液 长 试 素 还 验 化 试 验 试 原 试 验 验 产 验 气 试 验 7.5 试验步骤 7.5.1 增菌:取1∶10试液10mL,放入装有90mL普通肉汤培养液的三角烧瓶中,在37℃下培 养18~24h,有绿浓菌生长时,培养液表面多有一层薄菌膜,且呈黄绿色或蓝绿色。 7.5.2 分离培养:挑取增菌培养物,划线接种在十六烷三甲基溴化铵琼脂平皿上(也可划线 接种在乙酰胺培养基上)。在37℃培养18~24h,在培养基上,菌落扁平无定型、呈灰白色。 向周边扩散或略有蔓延、表面湿润,周围的培养基常扩散有水溶性色素(在乙酰胺培养基上 ,菌落扁平、边缘不整齐,周围的培养基略带粉红色,而其他菌不生长)。 7.5.3 纯培养:挑取可凝绿脓杆菌的分离培养物菌落2~3个放入肉汤培养基,在37℃培养1 8~24h。 7.5.4 染色镜检:挑取可疑菌落、涂片、革兰氏染色,经镜检为阳性者,进行氧化酶试验 。 7.5.5 氧化酶试验;取一小块白色滤纸,放在平皿内,用玻璃棒挑取绿脓杆菌的可疑菌落 ,涂在滤纸上,加1滴新配制的二甲基对苯二胺试液(1%),30s内出现粉红色或紫红色,为阳 性;若培养物不变色,氧化酶试验为阴性。 7.5.6 绿脓杆菌试验:取可疑菌落2~3个,分别接种在绿脓菌素测定培养基上,在37℃培 养24h,加入氯仿3~5mL,充分振荡使培养物中的绿脓菌素溶解于氯仿液内,待氯仿提取液 呈蓝色时,用移液管将氯仿移到另一试管中并加入1mol/L的盐酸1mL左右,振荡后静置片刻 。如上层盐酸液内出现粉红色到紫红色时为阳性,说明样品中有绿脓菌素存在。 7.5.7 硝酸盐还原产气试验:挑取被检的纯培养物,接种在硝酸盐胨水培养基中,置37℃ 培养24h,观察结果。凡在硝酸盐胨水培养基内的小试管中有气体者,为阳性。表明该菌能 还原硝酸盐,并将亚硝酸盐分解产生氧气。 7.5.8 明胶液化试验:取绿脓杆菌可疑菌落的纯培养物,穿刺接种在明胶培养基内,在37 ℃培养24h,取出放入冰箱(0~4℃)10~30min,仍呈溶解状,为阳性凝固不溶解者为明胶液 化试验阴性。 7.5.9 42℃生长试验:挑取纯培养物,接种在普通琼脂斜面培养基上,在42±1℃,培养24 ~48h,绿脓杆菌能生长,为阳性。 7.6 试验结果:试样经增菌、分离培养、证实为革兰氏阴性杆菌,氧化酶及绿脓菌素试验 均为阳性者,样品判为有绿脓杆菌;绿脓菌素试验阴性而液化明胶,硝酸盐还原产气和42℃ 生长试验皆为阳性时,仍判样品中有绿脓杆菌。 8 金黄色葡萄球菌检验方法 8.1 方法原理 根据本菌的特有形态及培养特性,应用Baird-parker平皿进行分离,该平皿中的氯化锂 可抑制革兰氏阴性细菌生长,丙酮酸钠可刺激金黄色葡萄球菌生长,提高检出率,并利用分 解甘露醇和血浆凝固酶等特征,以兹鉴别。 8.2 材料与仪器 a. 生物显微镜; b. 恒温培养箱; c. 离心机; d. 移液管:1mL、10mL; e. 试管:φ15mm×150mm; f. 三角烧瓶:500mL或300mL; g. 载破片、盖破片; h. 接种环或针; i. 酒精灯。 8.3 试剂和培养基 a. 7.5%的氯化钠肉汤; b. Baird-parker平皿; c. 血琼脂培养平皿; d. 甘露发酵培养基; e. 盐水; f. 血浆。 8.4 试验程序 1∶10试验 ↓ 7.5%的氯化钠肉汤、增菌 36±1℃↓24h Brird-parker 平皿、分离培养 36±1℃↓24~48h 血琼脂平皿、纯培养 36±1℃↓24h _____________________________ ↓ ↓ ↓ 染色镜检 甘露醇发酵试验 血浆凝固酶试验 8.5 试验步骤 8.5.1 增菌:取1∶10试液10mL,放入装有90mL7.5%的氯化钠肉汤的三角烧瓶中,在36±1 ℃培养24~48h。Baird-parker平皿上有圆形光滑凸起,湿润直径为2~3mm,呈灰色到墨色 ,边缘色谈,周围呈一浑浊带,外层有一透明带。无Baird-parker培养基可划线接种在血琼 脂平皿上培养。血琼脂平皿上的菌落呈金黄色,大而突起,圆形不透明,表面光滑,周围有 溶血圈。 8.5.3 纯培养:从分离培养皿上,挑取单个疑似菌落接种于血琼脂平皿上,在36±1℃下培 养24h。 8.5.4 染色镜检:挑取纯培养的疑似菌落进行涂片和革兰氏染色、镜检。金黄色葡萄球菌 为革兰氏阳性菌,排列成葡萄状,无牙胞,无荚膜。致病性葡萄球菌,菌体较小,直径约为 0.5~1μm。 8.5.5 甘露醇发酵试验;取纯培养菌落接种到甘露醇发酵培养基中,在36±1℃培养24h。 金黄色葡萄球菌能发酵甘露醇产酸,培养基呈红色。 8.5.6 血浆凝固酶试验:吸取1∶4的新鲜兔血浆0.5mL,放入试管,加入待检的增菌24h肉 汤培养物0.5mL。混匀后放入36±1℃的培养箱或水浴锅中,每半小时观察一次,24h之内呈 现凝块,为阳性。同时用已知血浆凝固酶试验阳性和阴性菌株,作为对照。 8.6 试验结果 上述选择平皿上有可疑菌落生长,经染色镜检,证明为革兰氏阳性葡萄球菌,并能发酵 甘露醇产酸,血浆凝固酶试验阳性者,表明样品中有金黄色葡萄球菌。 附 录 A 微生物学检验的有关培养基和试剂 (补充件) A1 营养琼脂培养基(肉汤琼脂培养基) a. 成分 蛋白胨 10g 氯化钠 5g 琼 脂 15g 牛肉膏 3g 蒸馏水 1 000mL b. 制 法 将蛋白胨、氯化钠、琼脂、牛肉膏加到蒸馏水中,微温使溶,再加热煮沸,待琼脂完全 溶化后,混匀,用1mol/L NaOH溶液调pH值为7.4±0.2,过滤,分装于三角烧瓶,经121℃, 高压灭菌20min后,贮存0~4℃冷暗处备用。 A2 虎红琼脂培养基 a. 成 分 蛋白胨 5g 葡萄糖 10g 磷酸二氢钾 1g 硫酸镁(MgSO4·7H2O) 0.5g 琼 脂 20g 4/3000虎红水溶液 100mL 蒸馏水 900mL b. 制 法 将上述(除虎红水溶液外)各成分,分别加于蒸馏水中,加热溶解,过滤,再加入虎红水 溶液(四氯四碘荧光素溶液),同A1中b项分装后,在121℃高压灭菌20min。 A3 乳糖胆盐培养基 a. 成 分 蛋白胨 20g 猪胆盐 5g 乳 糖 5g 0.4%溴甲酚紫水溶液 2.5mL 蒸馏水 1 000mL b. 制 法 将蛋白胨、猪胆盐及乳糖溶于蒸馏水中,调pH值为7.4,加入指示剂(0.4%溴甲酚紫水溶 液)混匀,分装于有小倒管的试管中(见A12中b项),置于115℃高压灭菌20min。 A4 伊红美兰(EMB)琼脂 a. 成 分 蛋白胨 10g 乳 糖 10g 磷酸二氢钾 2g 琼 脂 20g 2%伊红水溶液 20mL 0.5%美兰水溶液 13mL 蒸馏水 1 000mL b. 制 法 先将琼脂加到900mL蒸馏水中,加热溶解,然后加入磷酸二氢钾、蛋白胨混匀,使之溶 解,再以蒸馏水补足至1 000mL,调pH值为7.2~7.4,分装于烧瓶内,在121℃高压火菌15mi n后备用。用时,加入乳糖并加热融化琼脂,在60℃左右以无菌手续加入灭菌的伊红、美兰 溶液,摇匀,倾注平皿使用。 A5 蛋白胨水 a. 成 分 蛋白胨 20g 氯化钠 5g 蒸馏水 1 000mL b. 制 法 将上述成分加热熔化,调pH值为7.0~7.2,分装小试管,经121℃高压灭菌15min。 A6 靛基质试剂(柯凡克试剂) a. 成 分 戊 醇 75mL 对二甲氨基苯甲醛 5g 浓盐酸 25mL b. 制 法 将对二甲氨基苯甲醛加入戊醇中,搅动使之完全溶解,然后1滴1滴缓慢地加入盐酸25mL 。 A7 革兰氏染色液 A7.1 染液制备 A7.1.1 结晶紫染色液 a. 成 分 结晶紫 1g 95%乙醇 20mL 1%草酸铵水溶液 80mL b. 制 法 将结晶紫溶于乙醇中,然后与草酸溶液混合。 A7.1.2 革兰氏碘液 a. 成 分 碘 1g 磺化钾 2g 蒸馏水 300mL b. 制 法 将碘与碘化钾进行混合,加入蒸馏水少许,充分振摇,待完全溶解后,再加蒸馏水至30 0mL。 A7.1.3 脱色液:95%乙醇 A7.1.4 复染液 A7.1.4.1 沙黄复染液 a. 成 分 沙 黄 0.25g 95%乙醇 10mL 蒸馏水 90mL b. 制 备 将沙黄溶解于乙醇中,然后用蒸馏水稀释。 A7.1.4.2 稀石炭酸复红液 a. 成 分 碱性复红 10g(研细) 第一步 95%乙醇 100mL 5%石炭酸水溶液 90mL 第二步 蒸馏水 90mL b. 制 法 将碱性复红加入乙醇,放约12h,过滤。取该溶液10mL,加入5%石炭酸水溶液,混合; 再取此液10mL加入蒸馏水,即为(1∶10)稀石碳酸复红液。 A7.2 染色法 A7.2.1 将涂片在火焰上固定,滴加结晶紫染色液,染1min,水洗。 A7.2.2 滴加革兰氏碘液,作用min,水洗。 A7.2.3 滴加95%乙醇脱色,约30s。 A7.2.4 滴加复染液(沙黄),复染1min,水洗,待干,镜检(注:用稀石炭酸复红液复染, 仅需10s)。 A7.3 染色结果 革兰氏阳性菌呈紫色,革兰氏阴性菌呈红色。 A8 十六烷三甲基溴化铵培养基 a. 成 分 牛肉膏 3g 蛋白胨 10g 氯化钠 5g 十六烷三甲基溴化铵 0.3g 琼 脂 20g 蒸馏水 1 000mL b. 制 备 将除琼脂外的其他成分混合,加热溶解,调pH值为7.4~7.6,加入琼脂,经115℃高压 灭菌20min后,制成平皿备用。 A9 乙酰胺培养基 a. 成 分 乙酰胺 10g 氯化钠 5g 无水磷酸氢二钾 1.39g 无水磷酸二氢钾 0.73g 硫酸镁(MgSO4·7H2O) 0.5g 酚 红 0.012g 琼 脂 20g 蒸馏水 1 000mL b. 制 法 除琼脂和酚红外,将其他成分加到蒸馏水中,加热溶解调pH值为7.2,加入琼脂、酚红 经121℃高压灭菌20min后,制成平皿备用。 A10 绿脓菌色素测定用培养基 a. 成 分 蛋白胨 20g 氯化镁 1.4g 硫酸钾 10g 琼脂 10g 丙三醇(甘油)(化学纯) 10g 蒸馏水 1 000mL b. 制 法 将蛋白胨、氯化镁和硫酸钾加到蒸馏水中,加温使之溶解,调pH值为7.4,加入琼脂和 甘油,加热溶解,分装于试管内,115℃高压灭菌20min后,制成斜面备用。 A11 明胶培养基 a. 成 分 牛肉膏 3g 蛋白胨 5g 明 胶 120g 蒸馏水 1 000mL b. 制 法 取各成分加在蒸馏水中浸泡20min,随时搅拌加温使之溶解,调pH值为7.4,分装于试管 内,经115℃高压灭菌20min后,直立放置凝后备用。 A12 硝酸盐蛋白胨水培养基 a. 成 分 蛋白胨 10g 酵母浸膏 3g 硝酸钾 2g 亚硝酸钠 0.5g 蒸馏水 1 000mL b. 制 法 将蛋白胨和酵母浸膏加到蒸馏水中,加温使之溶解,调pH值为7.2,煮沸过滤后补足液 量,加入硝酸钾和亚硝酸钠,溶解混匀,分装到加有小倒管的试管中,经115℃高压灭菌20m in后备用。 A13 7.5%的氯化钠肉汤 a. 成 分 蛋白胨 10g 牛肉膏 3g 氯化钠 75g 蒸馏水 1 000mL b. 制 法 将上述成分放入蒸馏水中加热溶解,调pH值为7.4,分装后经121℃高压灭菌15min。 A14 Baird-parker平皿 a. 成 分 胰蛋白胨 10g 牛肉膏 5g 酵母浸膏 1g 丙酮酸钠 10g 甘氨酸 12g 氯化锂(LiCl·6H2O) 5g 琼 脂 20g 蒸馏水 950mL b. 制 法 将各成分加到蒸馏水中,加热煮沸完全溶解,冷至25℃,调pH值为7.0±0.2。分装每瓶 95mL,经121℃高压灭菌15min。临用时,加热溶化,每95mL加入预热至50℃的卵黄亚碲酸钾 增菌剂5mL,摇匀后倾注平皿。培养基应是致密不透明的。使用前在冰箱贮存不得超过48h( 注:增菌剂的配制:30%的卵黄生理盐水50mL,与除菌过滤1%亚碲酸钾溶液10mL混合,保存 于冰箱内)。 A15 血琼脂培养基 a. 成 分 营养琼脂 100mL 脱纤维兔血浆 10mL b. 制 法 将营养琼脂加热溶化,待冷至50℃左右,以无菌手续加入脱纤维兔血浆,摇匀,制成平 皿,置冰箱内备用。 c. 血浆制备 取3.9%柠檬酸钠溶液(121℃灭菌30min)。每1份加入全血4份,混匀静置,2 000~3 000 r/min离心3~5min。血球下沉,取上面血浆。 A16 甘露醇发酵培养基 a. 成 分 蛋白胨 10g 氯化钠 5g 甘露醇 10g 牛肉膏 5g 0.2%溴麝香草酚蓝溶液(指示剂) 12mL 蒸馏水 1 000mL b. 制 法 将蛋白胨、氯化钠、牛肉膏加到蒸馏水中,加热溶解,调pH值为7.4,加入甘露醇和指 示剂,混匀后分装试管中,经115℃高压灭菌20min后备用。 A17 乳糖发酵培养基 a. 成 分 蛋白胨水 2g 氯化钠 3g 磷酸氢二钠(Na2HPO4·12H2O) 2g 0.4%溴麝香草酚蓝液(BTB) 6mL 乳 糖 5g 蒸馏水 1 000mL b. 制 法 除乳糖和BTB外的其他成分,加在蒸馏水中,微湿溶解,调pH值为7.4,加入乳糖和BTB ,混匀,分别装于有倒管的试管内,每管约5mL,经115℃高压灭菌20min后备用。 ______________________ 附加说明: 本标准由国家建筑材料工业局碱阳非金属矿研究所负责起草。 本标准主要起草人潘宇清。

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